Elektrogesponnene Chitosan-Polyethylenoxid/Fibrinogen-Gerüste für nachhaltige PDGF-Freisetzung und verbesserte Wundheilung
Wundheilung ist ein vielschichtiger Prozess, der durch Wachstumsfaktoren, Zellmigration und extrazelluläre Matrix-Remodellierung gesteuert wird. Während bioaktive Verbände Fortschritte gemacht haben, erreichen nur wenige die klinische Praxis aufgrund von Abgabeherausforderungen. Wir entwickelten ein nanofasriges Gerüst aus Chitosan (CS), Polyethylenoxid (PEO) und Fibrinogen (Fb) mittels einer Dual-Spinneret-Elektrospinn-Plattform. Der resultierende CS-PEO/Fb-Verbund zeigte nanometer-skalen Fasern, gleichmäßige Polymerverteilung und günstige mechanische Integrität. Die Einbindung von plättchenabgeleitetem Wachstumsfaktor (PDGF) erfolgte ohne Bioaktivitätsverlust, und Freisetzungsstudien enthüllten ein biphasisches Profil, das 21,6 % des PDGF innerhalb der ersten Stunde freisetzte, gefolgt von nachhaltiger Freisetzung über 48 h. In-vitro-Fibroblasten-Migrationsassays bestätigten, dass PDGF, das aus dem Gerüst freigesetzt wurde, die Wirksamkeit einer einzelnen 50 ng ml⁻¹ Dosis erreichte, während die Fb-Komponente allein die Migration moderat förderte. Der Verbunds Wasserdampfdurchlässigkeit (≈807 g m⁻² Tag⁻¹) und Zugfestigkeit (≈0,3 MPa) entsprechen klinischen Wundverbandsstandards. Zusammen demonstrieren diese Daten, dass CS-PEO/Fb elektrogesponnene Gerüste eine robuste, bioaktive Plattform für nachhaltige Wachstumsfaktor-Freisetzung und beschleunigte Wundheilung bieten. Trotz Fortschritten in der Wundversorgung bleibt die Übersetzung bioaktiver Verbände in die Klinik begrenzt. Der Wundheilungs-Kaskade liegt ein koordiniertes Zusammenspiel von Zytokinen, Immunzellen und Matrixproteinen zugrunde. Wachstumsfaktoren, obwohl potent, leiden unter schneller Clearance und kurzer Halbwertszeit, was wiederholte Dosierung erforderlich macht, die für Patienten belastend ist. Ein Verband, der nachhaltige, lokalisierte Abgabe ermöglicht, würde Ergebnisse und Akzeptanz dramatisch verbessern. PDGF ist ein entscheidender chemotaktischer Agent, der Neutrophile, Monozyten und Fibroblasten mobilisiert und Matrixablagerung und Narbenbildung moduliert. Das FDA-zugelassene Regranex® Gel (2,2 µg cm⁻²) beschleunigt Heilung um ~30 % bei diabetischen Ulzera, doch seine tägliche Anwendung ist unpraktisch. Daher ist ein nachhaltiges Freisetzungssystem wünschenswert. Elektrospinnen bietet einen vielseitigen Weg, nanofasrige Matten herzustellen, die die native extrazelluläre Matrix emulieren. Natürliche Polymere wie Kollagen, Elastin und Fibrinogen besitzen inhärente Bioaktivität und Affinität für Wachstumsfaktoren. Fibrinogen allein fehlt jedoch die mechanische Festigkeit für langfristige Verbandsanwendungen. Chitosan, ein desacetylierter Chitin-Derivat, bietet antimikrobielle Aktivität und kann elektrogesponnen werden, wenn es mit PEO gemischt wird. Die polykationische Natur von CS erschwert das Mischen mit negativ geladenem Fb, aber ein Dual-Düsen-Elektrospinner überwindet elektrostatische Inkompatibilitäten und ermöglicht gleichmäßige Verbundbildung. Alle Reagenzien (Essigsäure, CS, PEO, Fb, HFIP, BSA, DMSO) und Zelllinien (humane dermale Fibroblasten PCS-201-012) wurden von Sigma-Aldrich oder ATCC bezogen und unverändert verwendet. Rekombinantes humanes PDGF-BB stammte von PeproTech. CS-PEO-Lösungen (5,5 Gew.%, CS:PEO = 2:1) wurden in 1 % Essigsäure mit 0,5 % BSA und 10 % DMSO hergestellt. Fb wurde in einer 1:9 (v/v) HFIP/10× EMEM-Mischung bei 110 mg ml⁻¹ gelöst. PDGF wurde unmittelbar vor dem Spinnen zugegeben. Dual-Spinneret-Elektrospinnen (NE-1000 Spritzenpumpe, 18-Gauge-Nadeln) verwendete 0,7 ml h⁻¹ (CS-PEO) und 1,0 ml h⁻¹ (Fb) Flüsse, Spannungen von 28 kV und 22 kV, und eine 25 RPM rotierende Mandrel bei 22 cm (CS-PEO) und 12,5 cm (Fb). Scannen wurde 3 h bei 35–45 % rel. Luftfeuchtigkeit durchgeführt. FESEM-Bildgebung (Zeiss Sigma VP-40) von goldbeschichteten Proben quantifizierte Faserdurchmesser (n = 100 pro Gerüst) via ImageJ. CS-PEO/Fb-Fasern erreichten im Durchschnitt 202 ± 113 nm, dünner als CS-PEO (270 ± 68 nm) und Fb (351 ± 102 nm) allein. ToF-SIMS (Bi₃²⁺, 30 kV) kartierte charakteristische Ionen (CNO⁻, CN⁻, C₂H₅O⁺) über 50 × 50 µm Raster, was gleichmäßige CS-PEO- und Fb-Verteilung bestätigte. Gemessen gemäß ASTM D7334-08 mit 2 µl destilliertem Wasser. CS-PEO/Fb zeigte einen hydrophilen Winkel von 61,4 ± 7,6°, intermediär zwischen CS-PEO (44,2 ± 5,1°) und Fb (115,7 ± 16,2°). Uniaxiale Zugtests (Instron E3000, 1 mm min⁻¹) an 40 × 25 mm Streifen (Dicke 94 ± 7 µm) erzeugten Spannungs-Dehnungs-Kurven. CS-PEO/Fb erreichte 0,31 ± 0,02 MPa Spitzenzugspannung, überlegen zu Fb allein (0,12 ± 0,01 MPa). WVTR wurde gemäß ASTM E96 mit Silicagel-Trockenmitteln bestimmt; CS-PEO/Fb erreichte 806,5 ± 56,1 g m⁻² Tag⁻¹, im klinisch wünschenswerten Bereich (≈2000 g m⁻² Tag⁻¹). Indirekte WST-1-Assays (ISO 10993-5) über 120 h zeigten keine signifikante Proliferationshemmung bei 48 h, obwohl ein moderater Rückgang bei 72 h auftrat, wahrscheinlich aufgrund des CS-Acetylierungsgrads. Live/Dead- und Phalloidin-DAPI-Färbung von Fibroblasten auf Gerüstooberflächen zeigte gesunde Morphologie und robuste Adhäsion, vergleichbar mit Fibronektin-beschichteten Kontrollen. Gerüste inkubiert in FBM (37 °C, 5 % CO₂) zeigten linearen Massenverlust nach initialem 1-h-Burst, wobei Integrität für ≥48 h erhalten blieb. ELISA quantifizierte kumulative Freisetzung: 1,8 ± 0,7, 4,4 ± 1,8 und 11,4 ± 4,8 ng mg⁻¹ bei 2, 4 und 8 µg ml⁻¹ Beladung. Ein biphasisches Muster setzte 21,6 % innerhalb der ersten Stunde frei. ORIS™-Migrationsassays zeigten, dass Eluate aus PDGF-beladenen Gerüsten die durch eine einzelne 50 ng ml⁻¹ PDGF-Dosis induzierte Migration erreichten, mit nachhaltigen Effekten bis 48 h. Fb allein förderte die Migration ebenfalls moderat. Dual-Spinneret-Elektrospinnen vereinte CS-PEO und Fb erfolgreich in eine homogene nanofasrige Matrix, überwindend elektrostatische Inkompatibilitäten. Die Faserdurchmesserreduktion im Verbund wird auf erhöhte Strahlabstoßung zurückgeführt, die Ablagerungszeit verlängert und Biegeinstabilitäten induziert, die feinere Fasern erzeugen. ToF-SIMS-Mapping bestätigte gleichmäßige Oberflächenzusammensetzung, und Wasserkontaktwinkel zeigten eine hydrophile Oberfläche, die bakterielle Adhäsion verhindert und Proteinadsorption unterstützt. Mechanische Tests zeigten, dass CS-PEO-Integration die Zugfestigkeit für Wundverbände wiederherstellt und Fbs inhärente Schwäche adressiert. WVTR-Messungen platzierten CS-PEO/Fb im therapeutischen Fenster für feuchte Wundumgebungen, balancierend Exsudatmanagement und Sauerstoffpermeabilität. Zytotoxizitätsassays legten nahe, dass 잔여 HFIP oder hohe DA CS-Konzentrationen minimal waren; das biologische Sicherheitsprofil des Gerüsts ist für klinische Translation akzeptabel. PDGF-Freisetzungsprofile wiesen ein wünschenswertes biphasisches Muster auf: ein früher Burst, der ~21 % der Dosis freisetzte, gefolgt von kontrollierter, linearer Freisetzung, die biologisch relevante Konzentrationen über 48 h aufrechterhielt. Diese nachhaltige Abgabe eliminiert die täglichen Verbandswechsel, die Regranex® erfordert, was potenziell die Patienten-Compliance verbessert. Funktionelle Assays bestätigten, dass freigesetztes PDGF chemotaktische Aktivität behielt und Fibroblasten-Migration erreichte, die einer einzelnen Hochdosis-Behandlung entsprach. Der additive Effekt von Fbs intrinsischen chemotaktischen Eigenschaften verstärkt die zelluläre Rekrutierung weiter, was auf einen synergistischen Mechanismus hindeutet. Elektrogesponnene CS-PEO/Fb nanofasrige Gerüste kombinieren die antimikrobiellen und mechanischen Vorteile von Chitosan mit der Bioaktivität von Fibrinogen, während sie nachhaltige, funktionale PDGF-Freisetzung ermöglichen. Ihre Nanoskalenarchitektur, angemessene WVTR und mechanische Robustheit machen sie zu vielversprechenden Kandidaten für nächste-Generation Wundverbände, die Fibroblasten-Rekrutierung und Heilung beschleunigen können, ohne die Unannehmlichkeit wiederholter Wachstumsfaktor-Anwendungen.Zusammenfassung
Hintergrund
Methoden
Materialien
Gerüstfabrikation
Morphologie
Oberflächenchemie
Wasser-Kontaktwinkel
Mechanische Tests
Wasserdampfdurchlässigkeit
Zytotoxizität
Zelladhäsion
Degradation
PDGF-Freisetzung
Fibroblasten-Migration
Ergebnisse und Diskussion
Schlussfolgerung
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